普利莱 甘油三酯试剂盒 甘油三酯含量检测试剂盒 甘油三酯含量检测（厂家直销批发）

普利莱 甘油三酯试剂盒 甘油三酯含量检测试剂盒 甘油三酯含量检测

货号	产品名称	规格	价格（元）
E1013-50	组织细胞甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒	50次	650
E1013-105	组织细胞甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒	105次	950
E1025-105	高脂样本甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒（适用肝脏、脂肪细胞）	105次	1160

货号	产品名称	规格	价格（元）
E1014-50	油脂食品甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒	50次	650
E1014-105	油脂食品甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒	105次	950

货号	产品名称	规格	价格（元）
E1003-125	液体样本甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒	125次	650
E1003-250	液体样本甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒	250次	950

货号	名称	规格	价格
E1025-105	高脂样本甘油三酯（TG）酶法测定试剂盒（适用肝脏、脂肪细胞）	105次	1160元

货号E1003描述：甘油三酯(TG)是由甘油和脂肪酸酯化而成，是血脂的主要成分，也是机体重要的供能物质。高甘油三酯和高胆固醇血症是临床常见的高脂血症，与许多疾病相关。与血浆甘油三酯测定相比，实体组织和细胞的甘油三酯测定并非易事。本试剂盒避免了有毒的氯仿甲醇提取、繁杂的氮气吹干和脂质复溶等步骤，采用高效能试剂进行组织细胞裂解和甘油三酯抽提，而且优化了GPO Trinder酶学反应组分和操作步骤。简单易行、灵敏度高检测范围为 20-2000μmol/L。可用于精确测量动植物组织细胞、固态食品材料、高浓度油料样品中的甘油三酯含量。

参考文献：

1. Trinder, P. (1969). Ann. Clin. Biochem. 6: 24 – 27.

Barham D and Trinder P. (1972). Analyst 97: 142 – 145

原理：（1）脂肪酶分解血清中的甘油三酯为甘油；（2）甘油激酶将甘油磷酸化为3-磷酸甘油；（3）3-磷酸甘油被甘油磷酸氧化酶氧化产生过氧化氢；在过氧化物酶作用下生色底物转化为苯醌亚胺，其光密度值与甘油浓度成正比。

适用范围：适用于动物实体组织、培养细胞、油料植物组织、固态食品组织、高浓度油料样品中甘油三酯含量的测定。

组成：

(1) 裂解液 50ml

(2) R1试剂 16ml

(3) R2试剂 4ml

(4) 4mmol/L甘油标准品1ml

以上组分均4 oC储存，6个月有效。

所需设备：酶标仪、生化分析仪或721、722型可见光分光光度计。最佳工作波长550nm，如无此波长建议优先选用570nm、次选530、490nm。

操作步骤：

一组织细胞裂解：

在裂解前，组织或者细胞用PBS洗涤两次以去除甘油

1.原代脂肪细胞：200g，5分钟离心收集细胞。建议每100 μl压积（Packed Cell Volume）脂肪细胞加入1ml裂解液，震荡裂解，而后室温静置10分钟。

2.分化脂肪细胞或非脂肪细胞：可先用胰酶消化、离心收集细胞而后进行裂解，也可直接在培养皿内进行裂解。通常情况下，可按比例每1x106个细胞加入0.1ml裂解液，混匀后室温静置10分钟。

3.动物组织：离心管精确称重，加入组织块后再称重，二者相减(即减量称重法)计算组织重量(约50mg)。强烈建议按比例每1mg组织加20μl裂解液以减少样品间蛋白和脂质含量变异而产生的误差。强烈建议裂解液用量在1ml左右，保证有效的匀浆裂解与脂质提取。用电动高速匀浆器或手动玻璃匀浆器破碎组织。（不推荐超声方法，因其不能完全和均匀破碎。应根据预实验调整初始的组织细胞加入量），匀浆后静置10分钟。

4.植物油料种子、食品、含高油量样品：用减量称重法对样品进行精确称重，建议按比例每1mg组织加20μl裂解液以减少样品间蛋白和脂质含量变异而产生的误差。加入裂解液后可用研钵对样品进行研磨，而后将研磨液转移到新的离心管中，室温静置10分钟。

二.裂解液处理：

1. 取适量上清液转移到1.5ml离心管中，进行步骤2的操作。余下的裂解液可用BCA法蛋白定量试剂盒(#P1511)进行蛋白定量或－20oC储存。

2. 70oC 加热10分钟，组织量多时可能出现絮状沉淀。

3. 室温2000rpm离心5分钟，上层清液即可用于酶学测定。

二工作溶液配制：按4:1比例，取4ml试剂R1与1ml试剂R2混合即可，立即使用或4oC保存1天，变色弃去。

三标准品稀释：用蒸馏水、生理盐水或与样品缓冲液一致的液体，将4mM甘油标准品倍比稀释为1000、500、250、125、62.5、31.25、15.625、7.8125 μmol/L，通常取其中4~6管即可，注意设置0浓度对照反应管。

四甘油三酯浓度测定：

1. 参见下表进行加样。以96孔板为例，待测样品体积可在5、10、20μl之间，推荐以10μl为起始加样量。如果样品测量值超出线性范围，可进行适当稀释，最后根据稀释倍数计算浓度。

2. 37oC或25oC反应 15分钟。反应平衡后颜色在60分钟内稳定。

3. 先用蒸馏水 工作液的空白管调零，然后测定各管OD值。

4. 绘制标准曲线并计算甘油三酯浓度。

附Excel作图步骤：各标准管OD值为y轴，标准品浓度为x轴。(1)鼠标左键圈住数据，点击做图向导，选择-散点图-，点击-完成-。(2)鼠标右键点图上的某一点，点击-添加趋势线-，点击-选项-，点击-显示公式-和-R2值-。

5. 以每mg蛋白浓度或细胞数校正甘油三酯含量。

加样比例（检测范围20-2000μmol/L）

（可对样品和工作液比例进行微量调整）

	96孔微板测定			1 ml比色杯测定
	空白管	标准品	样品	空白管	标准品	样品
蒸馏水μl	10			35
标准品μl		10			35
样品μl			10			35
工作液μl	190	190	190	665	665	665

说明：

1. 维生 素C0.18g/L、血红蛋白2g/L、胆红素0.25g/L、强还原剂二硫苏糖醇、巯基乙醇等会干扰测。高浓度EDTA会干扰测定。

2. 样本即使保存在-20oC的环境下，甘油三酯也会自发水解。因此建议样品4oC保存时间应短于24小时，当-70oC保存时，也应不超过1个月。

3. 如果室温较低，应延长反应时间或在37oC进行反应。

4. 不同类型组织和细胞内甘油三酯含量差别很大，应根据预实验调整初始的裂解液的加入量。对于脂肪组织而言，一般来说裂解液用量在20-30mg/ml即可。

以下为用本试剂盒发表的部分文章，供参考：

1、Zhang Xuequn, Yang Juntao, Guo Yuanbiao, Ye Hua, Yu Chaohui, Xu Chengfu, Xu Lei, Wu Songfeng, Sun Wei, Wei Hangdong, Gao Xue, Zhu Yunping, Qian Xiaohong, Jiang Ying, Li Youming, He Fuchu, 2009. Functional proteomic analysis of nonalcoholic fatty liver disease in rat models: Enoyl–coenzyme a hydratase down-regulation exacerbates hepatic steatosis. Hepatology, 51(4): 1190-1199.

2、Luo Zhidan, Ma Liqun, Zhao Zhigang, He Hongbo, Yang Dachun, Feng Xiaoli, Ma Shuangtao, Chen Xiaoping, Zhu Tianqi, Cao Tingbing, Liu Daoyan, Nilius Bernd, Huang Yu, Yan Zhencheng, Zhu Zhiming, 2011. TRPV1 activation improves exercise endurance and energy metabolism through PGC-1α upregulation in mice. Cell Research, doi:10.1038/cr.2011.205.

3、Pang Shanshan, Tang Haiqing, Zhuo Shu, Qin Zang Ying, Le Yingying, 2010. Regulation of Fasting Fuel Metabolism by Toll-Like Receptor 4. Diabetes, 59(12): 3041-3048.

4、Ding Yunfeng, Yang Li, Zhang Shuyan, Wang Yang, Du Yalan, Pu Jing, Peng Gong, Chen Yong, Zhang Huina, Yu Jinhai, Hang Haiying, Wu Peng, Yang Fuquan, Yang Hongyuan, Steinbuchel Alexander, Liu Pingsheng, 2011. Identification of the major functional proteins of Prokaryotic lipid droplets. The Journal of Lipid Research, doi:10.1194/jlr.M021899.

5、Zhao Zhigang, Luo Zhidan, Wang Peijian, Sun Jing, Yu Hao, Cao Tingbing, Ni Yinxing, Chen Jing, Yan Zhencheng, Liu Daoyan, Zhu Zhiming, 2011. Rosiglitazone Restores Endothelial Dysfunction in a Rat Model of Metabolic Syndrome through PPARγ- and PPARδ-Dependent Phosphorylation of Akt and eNOS. PPAR Research, doi:10.1155/2011/291656.

6、Deng Jiagang, Li Chunyang, Wang Hailian, Hao Erwei, Du Zhengcai, Bao Chuanhong, Lv Jianzhen, Wang Yi, 2011. Amygdalin mediates relieved atherosclerosis in apolipoprotein E deficient mice through the induction of regulatory T cells. Biochemical and Biophysical Research Communications, 411(3): 523–529.

7、Zhai, W Xu, C Ling, Y Liu, S Deng, J Qi, Y Londos, C Xu, G 2010. Increased Lipolysis in Adipose Tissues is Associated with Elevation of Systemic Free Fatty Acids and Insulin Resistance in Perilipin Null Mice, Hormone Metabolic Research, 42: 247-253.

8、Yang Zhi, Yin Ji-Ye, Gong Zhi-Cheng, Huang Qiong, Chen Hao, Zhang Wei, Zhou Hong-Hao, Liu Zhao-Qian, 2009. Evidence for an effect of clozapine on the regulation of fat-cell derived factors. Clinica Chimica Acta, 408(1–2): 98-104.

9、He Yong-Han, He Ying, Liao Xi-Lu, Niu Yu-Cun, Wang Guan, Zhao Chen, Wang Liang, Tian Ming-Jie, Li Ying, Sun Chang-Hao, 2012. The calcium-sensing receptor promotes adipocyte differentiation and adipogenesis through PPARγ pathway. Molecular and Cellular Biochemistry, 361(1-2): 321-328.